一种失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法与流程

1.本发明属于水处理技术领域，具体涉及一种失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法。


背景技术：

2.好氧颗粒污泥(aerobic granular sludge,ags)是近年来出现的一种具有良好应用前景的污水生物处理工艺，其具有沉降性能好、污泥活性高、生物密度大、抗冲击能力强等诸多优势。微藻具有光合速率高、繁殖快、环境适应能力强、氮磷处理效率高等优点，部分微藻具有较强的化能异养和混合营养的能力，能直接利用污水中的某些有机物合成为自身细胞物质。结合ags和微藻各自的优势，将两者相耦合形成一种新型的藻-菌颗粒污泥(algal-bacterial granular sludge,abgs)污水处理技术，一方面能够解决微藻沉降性能差的问题，另一方面细菌代谢产生的二氧化碳可以供微藻光合作用使用，构成abgs微环境中氧的循环，从而降低abgs的外部供氧量等系统能耗，并在一定程度上实现污水厂co2等温室气体减排的目标。
3.污泥系统中的某些细菌可以分泌多种群体感应信号分子，他们负责传递指令和信息。其中ahls(酰化高丝氨酸内酯类化合物)是被发现的最早并被完整表征、同时也是目前研究最全面的一类信号分子。他们对ags的形成和稳定至关重要，其中表现在对提高微生物活性、胞外聚合物质(extracellular polymeric substances,eps)分泌和细菌聚集方面有一定促进作用。通常由于eps附着在微生物表面，因此eps是决定微生物表面性质的关键因素。信号分子可以通过调节eps的合成来改变微生物的表面性质，进一步来影响颗粒的形成与分解。研究表明ahls能够促进eps成分如色氨酸和蛋白的合成，从而提高微生物表面的疏水性。另外，ahls对藻类生理特性的影响也有相应报道，细菌分泌的ahls会促进微藻的生长。因此由ahls介导的群体感应对abgs结构完整性以及菌藻共生关系的维持至关重要。
4.abgs的完全造粒需要较长的时间，这个过程中会产生较高的能耗，从而限制了这一新型污水处理技术的发展。冷冻保存是目前储存颗粒污泥的一种通用方法。目前针对储存后abgs的再次激活的研究分别有将污泥在低温(4度或-20度)条件下保存半年或在室温下短期储存再启动的探索。但低温储存颗粒污泥会产生时间及能耗的成本投入且操作不便，同时污染物去除效率的显著降低对重启也会造成一定困难；室温短期储存后恢复效果较优，然而储存时间不长则不利于实际工程的应用，若采用现有技术在室温下长期储存后再启动，颗粒形态恢复不好，污染物去除效率低。


技术实现要素：

5.因此，本发明要解决的技术问题在于克服现有技术中的abgs在室温下长期储存后再启动效果差的缺陷，从而提供一种失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法。
6.为此，本发明提供了以下技术方案。
7.一种失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法，包括：投加失稳藻-菌颗粒污泥，将能分泌ahls的功能细菌投加至进水中，一直运行至藻-菌颗粒污泥的边缘紧实、svi
30
≤40ml/g、氨
氮、总磷去除率均在80％以上后停止投加功能细菌；
8.所述失稳藻-菌颗粒污泥是稳定运行100d以上的藻-菌颗粒污泥在室温下静置半年以上获得的污泥；
9.所述功能细菌是在培养稳定运行的藻-菌颗粒污泥的过程中筛选而出，并进行扩大培养的。
10.藻-菌颗粒污泥的边缘紧实指的是80％以上藻-菌颗粒污泥边缘无丝状细菌存在。
11.进一步的，筛选功能细菌的步骤包括：
12.步骤1、培养藻-菌颗粒污泥，并定期测定ahls的浓度；
13.步骤2、取ahls浓度最高时期的泥水混合液破碎后富集培养，分离细菌；
14.步骤3、将形态差异明显的各种细菌挑选出来进行培养，获得不同的菌株；
15.步骤4、将步骤3获得的不同菌株分别接种在液体培养基内富集，取上清液，上清液中加入酸进行酸化；
16.步骤5、将酸化后的上清液加入含有生物传感器的培养基中，筛选出能分泌ahls的功能细菌。
17.进一步的，步骤5后还包括对筛选出的功能细菌进行生物鉴定，确保精确性。
18.进一步的，筛选出能功能细菌后，分别进行扩大培养，并将扩大培养的各种功能细菌对数期的菌液按一定比例混合，得到混合生物菌液，将一定量的混合生物菌液投加至进水中；
19.优选地，选择其中8～10株分泌ahls浓度高的功能细菌分别进行扩大培养。
20.进一步的，各种功能细菌对数期的菌液等体积混合。
21.进一步的，所述步骤1中，培养藻-菌颗粒污泥满足以下条件中的至少一项：
22.(1)采用的接种污泥为市政污水处理厂好氧池污泥；
23.(2)刚加入接种污泥后反应器中的初始污泥浓度mlss为3000～5000mg/l；
24.(3)采用的进水的cod为200～250mg/l，nh
4+-n为18～25mg/l，tp为3～3.5mg/l；
25.(4)采用的进水温度为25
±
2℃，ph为7.5
±
0.5；
26.(5)光照强度为40～120μmol/m2·
s，光照周期为12h/12h或6h/18h；
27.(6)反应器运行模式为厌氧/好氧/缺氧。
28.进一步的，反应器运行周期为6-8h；
29.优选地，运行周期中进水2～5min，进水后不曝气，先以厌氧状态运行2h～3h，曝气后再在好氧状态下运行90～120min，最后关掉曝气在缺氧状态下运行一段时间后，沉降2-15min，出水5～10min；
30.优选地，曝气流量为100～150ml/min。运行周期指的是从进水到出水的一个周期。
31.进一步的，所述步骤5中，含有生物传感器的培养基包括含a136菌液平板和含cv026菌液平板。
32.进一步的，所述混合生物菌液的od
600
控制在0.8-1。
33.进一步的，所述混合生物菌液的投加量与进水量的体积比在1/1000～1/500之间。
34.进一步的，所述步骤1中培养藻-菌颗粒污泥的过程中细菌自身分泌的ahls信号分子有c6-hsl、3oc12-hsl、c8-hsl和c12-hsl。
35.进一步的，测定ahls的浓度包括：取一定量的泥水混合液进行过滤，对过滤后的水
相进行萃取，去除萃取液中的溶剂，采用液相色谱仪和三重四级杆质谱检测器联用的方式对ahls浓度进行检测。细菌颗粒化完成前(启动的前50天)ahls浓度最高，成熟期浓度有下降趋势。
36.进一步的，分离筛选功能细菌采用的培养基为lb固体培养基，扩大培养功能细菌采用的培养基为lb培养基。
37.进一步的，步骤1中，培养藻-菌颗粒污泥采用间歇式sbr反应器，在反应器外部布置1～3根灌胶防水led硬灯条来控制光照强度，灯条外用锡纸包裹防止受到周围环境的干扰。
38.进一步的，步骤1的svi
30
(污泥容积指数)为40-120ml/g。
39.进一步的，步骤1中，体积交换比(每个周期出水量占整个反应器有限容积的比例)为50％，水力停留时间(hrt)为12-16h。
40.优选地，步骤2中，在培养藻-菌颗粒污泥过程中ahls浓度最高的时期取100-200ml的泥水混合液。
41.优选地，含a136菌液平板制备方法包括：在无菌条件下，将根癌农杆菌a136在含3-5mg/ml四环素和5-20mg/ml壮观霉素的lb培养基中过夜活化；再将含过夜活化的根癌农杆菌a136菌液与含5-10mg/l 5-溴-4-氯-3-吲哚-β-d-半乳糖苷(x-gal)的lb培养基混合，平铺于无菌培养皿上，凝固形成培养平板，然后在平板上打孔形成数个直径为0.8-1cm的圆孔。其中，含过夜活化的根癌农杆菌a136菌液占含过夜活化的根癌农杆菌a136菌液+lb培养基总体积的10％-20％。
42.优选地，含cv026菌液平板制备方法包括：在无菌条件下，将紫色色杆菌cv026在含有1-5mg/ml卡那霉素的lb培养基中过夜活化；再将含活化后的紫色色杆菌cv026菌液与lb培养基混合后平铺于无菌培养皿上，凝固形成培养平板，然后在平板上打孔形成数个直径为0.8-1cm的圆孔。其中，含活化后的紫色色杆菌cv026菌液占含活化后的紫色色杆菌cv026菌液+lb培养基总体积的10％～20％。
43.生物传感器作用原理：当有碳链长度为6-14之间的ahls存在时，根癌农杆菌a136可将x-gal水解从而使视觉上出现蓝色，当将被检菌株的培养物上清液加入含有根癌农杆菌a136和x-gal的培养平板时，有蓝色产生，则说明该被检菌株具备分泌ahls的能力。当有碳链长度为4-8之间的ahls存在时会诱导紫色色杆菌cv026启动其群体感应产生紫色杆菌素，当将被检菌株的培养物上清液与紫色色杆菌cv026共培养时有紫色产生，则说明该被检菌株具备分泌ahls的能力。
44.恢复成功的标志是污泥颜色呈深绿色，污泥粒径增加，绝大部分颗粒边缘结构紧密，svi
30
≤40ml/g，cod、氨氮、总磷去除率＞70％。
45.本发明技术方案，具有如下优点：
46.1.本发明失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法包括：投加失稳藻-菌颗粒污泥，将能分泌ahls的功能细菌投加至进水中，一直运行至藻-菌颗粒污泥的边缘紧实、svi
30
≤40ml/g、氨氮、总磷去除率均在80％以上后停止投加功能细菌；所述失稳藻-菌颗粒污泥是稳定运行100d以上的藻-菌颗粒污泥在室温下静置半年以上获得的污泥；所述功能细菌是在培养稳定运行的藻-菌颗粒污泥的过程中筛选而出，并进行扩大培养的。
47.通过可分泌ahls信号分子的功能细菌的群体感应来驯化长期在室温条件下储存
的abgs，并将激活后的此类污泥作为培养abgs的接种污泥再利用，对abgs的快速启动与批量规模化应用均具有重要意义。
48.本发明在原有的培养稳定运行的藻-菌颗粒污泥的过程中筛选功能细菌，一方面，可大幅度降低成本；另一方面，本发明失稳藻-菌颗粒污泥和筛选出的功能细菌均来自于系统本身，在藻菌系统中添加后不会对环境造成二次污染。同时此种方法较直接添加信号分子能够增加体系的生物多样性，恢复效率更快。
49.本发明方法能够快速获得结构稳定且除污率较高的abgs，既降低了藻-菌颗粒污泥的储存成本，也解决了实际工程对成熟abgs商业化需求的问题。同时该方法易于操作，材料来源于系统本身，不会对环境造成二次污染。
50.2.本发明提供的失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法，在培养藻-菌颗粒污泥的过程中定期提取信号分子并测定不同种类浓度，与abgs的污泥特性作相关性分析(试验数据通过由spss21.0进行数据分析。对象之间相互关系采用相关性分析，并经pearson检验(水平包括完全正相关r＝1和完全负相关r＝-1)。对象之间的差异性分析则采用one-way anova(水平包括显著p《0.05和极显著p《0.01)。结果显示检测到的信号分子c6-hsl、c8-hsl、3oc12-hsl及c12-hsl与污泥平均粒径及eps合成有显著的正相关性(p《0.01))，能够理清ahls类信号分子在abgs形成与成熟期的作用机制，在此过程中筛选出能够分泌信号分子的功能细菌并制成菌液投加进失稳的abgs系统，能使解体的颗粒污泥快速恢复到原始状态，有效缩减abgs重启时间。
51.3.本发明提供的失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法，取ahls浓度最高时的泥水混合液，筛选出的功能细菌分泌信号分子能力更强，更多种，浓度更高，群体反应更强。
附图说明
52.为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案，下面将对具体实施方式或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图是本发明的一些实施方式，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
53.图1为abgs的培养装置图；
54.图2为静置180d后的abgs显微镜形态图(放大40倍)；
55.图3为经实施例1的方法修复50d后abgs的照片；
56.图4为经对比例1的方法修复50d后abgs的照片；
57.图5为氨氮浓度在静置前及恢复阶段不同实施方式的变化情况；
58.图6为总磷浓度在静置前及恢复阶段不同实施方式的变化情况；
59.图7为静置前的abgs显微镜形态图(放大40倍)。
具体实施方式
60.提供下述实施例是为了更好地进一步理解本发明，并不局限于所述最佳实施方式，不对本发明的内容和保护范围构成限制，任何人在本发明的启示下或是将本发明与其他现有技术的特征进行组合而得出的任何与本发明相同或相近似的产品，均落在本发明的保护范围之内。
61.实施例中未注明具体实验步骤或条件者，按照本领域内的文献所描述的常规实验步骤的操作或条件即可进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市购获得的常规试剂产品。
62.实施例1
63.本实施例提供了一种失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法，包括以下步骤：
64.(1)培养稳定运行的藻-菌颗粒污泥，并在培养过程中筛选能分泌ahls的功能细菌，并进行扩大培养。
65.步骤1、培养藻-菌颗粒污泥，并在培养过程中定期测定系统中ahls的浓度：
66.培养藻-菌颗粒污泥的装置如图1所示，采用有机玻璃材质的柱状sbr反应器，内径10cm，高32cm，有效容积为2.3l。反应器外部绑有led灯带条，光照强度为40.7
±
1.8μmol/m2·
s，光照周期为12h/12h。反应器按a/o/a(厌氧/好氧/缺氧)模式运行，其中厌氧段只提供搅拌，搅拌速度约为250rpm。运行周期为6h，每天运行4个周期。其中每个周期进水2min，进水后不曝气，厌氧运行120min，曝气后再好氧运行90min，最后关掉曝气缺氧运行123-136min，沉降2-15min，出水10min。体积交换比为50％，水力停留时间(hrt)为12h。曝气通过底部曝气头完成，曝气流量设置为100ml/min。反应器进水、搅拌、曝气、出水及光照均连接微电脑实控开关来维持反应器的正常运行。进水采用人工模拟生活污水，进水温度为25
±
2℃，ph为7.5
±
0.5。
67.培养藻-菌颗粒污泥采用的接种污泥取自武汉市龙王嘴污水处理厂好氧池，污泥为絮状污泥，颜色呈黄褐色，污泥取回后先闷曝1天，再用人工模拟生活污水驯化一周。刚加入接种污泥后反应器中的初始mlss为3700mg/l，mlvss(混合液挥发性悬浮固体浓度)为1530mg/l，svi
30
为92.17ml/g。
68.人工模拟生活污水：cod 220mg/l(乙酸钠)、nh
4+-n 20mg/l(氯化铵)、tp 3mg/l(磷酸二氢钾)、mg
2+
10mg/l(硫酸镁)、ca
2+
10mg/l(氯化钙)、微量元素液1ml/l。微量元素液的组成为氯化铁0.9mg/l、硼酸0.15mg/l、碘化钾0.18mg/l、五水硫酸铜0.03mg/l、四水氯化锰0.06mg/l、七水硫酸锌0.12mg/l、六水氯化钴0.15mg/l、二水钼酸钠0.06mg/l、乙二胺四乙酸10mg/l。
69.在培养过程中测定系统中ahls浓度的方法包括：从反应器中取200ml泥水混合液经过放有0.45μm滤膜的抽滤瓶过滤，再对过滤后的水相用等体积的酸化乙酸乙酯(0.1％乙酸)萃取两次，将两次萃取得到的乙酸乙酯层的萃取液合并保存于-20℃待用。将上述萃取得到的乙酸乙酯层溶液利用旋转蒸发仪和氮吹仪进行溶剂脱除。残留物加入1ml色谱级甲醇重新溶解，收集于液相小瓶中待测。采用液相色谱仪和三重四级杆质谱检测器联用的方式对多种信号分子进行定量检测。结果表明反应器的泥水混合液中共检测出四种ahls类信号分子即c6-hsl，c8-hsl，c12-hsl和3oc12-hsl。确定了反应器中存在的信号分子种类则可以确定具体的方法筛选。
70.步骤2、在反应器中ahls总浓度最高的时期取一定量的泥水混合液，将泥水混合液破碎后富集培养，再在固体培养基上分梯度稀释分离细菌：
71.富集培养：测定反应器中泥水混合液ahls浓度的同时收集同时期缺氧阶段的颗粒污泥(abgs)，选取ahls浓度最高时期的abgs，用无菌磷酸盐缓冲溶液清洗3次后再加入等体积的无菌pbs溶液置于锥形瓶内振荡培养。锥形瓶中放入几颗玻璃珠，将污泥絮体打散，有
利于污泥样品中细菌的释放。震荡2h后静置10min，取20ml的上清液于含有abgs相同进水组分的无菌培养基中富集，置于25℃、150r/min恒温震荡培养箱上培养，直至培养基浑浊。此步骤重复3次，以确保细菌浓度达到较高的水平。
72.用无菌pbs溶液分级稀释(10-3
、10-4
、10-5
)并平板涂布于固体培养基上。
73.步骤3、将固体培养基中形态差异明显的细菌(不同属的细菌)挑选出来分别接种在新的固体培养基上重复划线培养3次，获得不同的菌株：
74.将平板中形态差异明显的细菌挑选出来接种在新的固体培养基上多次划线培养，将培养基放置在与反应器同等外界条件的生化培养箱中，观察到线型清晰，尾部呈多点状分布后即可。
75.步骤4、将步骤3获得的不同菌株接种在液体培养基内富集，取上清液，上清液中加入酸进行酸化：
76.分别将分离后的细菌按培养基体积1％的接种比例接种至lb液体培养基中，在37℃、150rpm下培养至od
600
＝0.3。取少量菌液离心(4℃、5000rpm)15min，收集上清液加入乙酸进行酸化，乙酸的质量浓度为1％。
77.步骤5、将酸化后的上清液加入含有生物传感器的培养基中，筛选出能分泌ahls的功能细菌，并将功能细菌进行生物鉴定。
78.根据步骤1中ahls类信号分子种类的测定结果配制含根癌农杆菌a136菌液平板感应器，配制步骤为：在无菌条件下，将根癌农杆菌a136在含有5mg/ml四环素和10mg/ml壮观霉素的lb培养基中过夜活化。再将过夜活化后的根癌农杆菌a136菌液和含10mg/l x-gal的lb培养基混合后在其冷却前平铺于无菌培养皿上等待凝固形成培养平板，过夜活化后的根癌农杆菌a136菌液占夜活化后的根癌农杆菌a136菌液+含10mg/l x-gal的lb培养基总体积的20％。再在平板上打孔以形成数个直径为0.8cm的圆孔。选取50ul酸化过的上清液分别接种到上述圆孔中。将平板放置在培养箱中培养24-36小时后，当培养平板上出现蓝色色素时则说明该菌株培养物上清液对根癌农杆菌a136菌液具有响应作用，可判定该菌株具备产生ahls的能力，具有群体感应效应，同时记录相应的各菌株产生蓝色的响应时间。
79.分泌ahls功能菌的生物鉴定：把所有具有群体感应效应的细菌经过16srrna测序，对它们进行种属鉴定。
80.选取圆孔中出现蓝色的面积大且响应时间短的多种菌株作接种至lb液体培养基中扩大培养，再将上述各个处于对数增长期的菌液等体积均匀混合，将混合后的菌液od
600
控制到1，得到混合生物菌液。
81.(二)激活失稳藻-菌颗粒污泥。
82.(1)将(一)中培养的稳定运行100d以上的成熟abgs(污泥平均粒径＞1mm，nh
4+-n、cod、tp去除率均在80％以上)在室温无外源光照条件下静置储存半年以上，得到失稳藻-菌颗粒污泥。稳定运行100d以上的成熟abgs静置前的abgs显微镜形态图如图7所示。
83.(2)将静置后的失稳藻-菌颗粒污泥置于sbr反应器中，sbr反应器的运行工况与进水配方与(一)中所述保持一致。
84.监测重启第1d时的两个反应器内的污泥sour值(比耗氧量率)、沉降性能、颗粒形态与进出水水质状况。测定结果表明污泥sour值较之前稳定时期下降超过50％，污泥颜色变黑，几乎观测不到微藻的存在。同时可见许多颗粒解体，絮状污泥含量明显增多，部分颗
粒结构松散呈细条状，在电子显微镜下的污泥形态如图2所示。污泥沉降性能显著下降，svi
30
升高至95ml/g。nh
4+-n的去除率从90％以上下降至70％以下，tp为负去除率。系统运行状况十分不佳。
85.将(一)中制得的混合生物菌液与(一)步骤1中的人工模拟生活污水按一定比例(v/v为1/500)组合配置，并将其作为反应器重启后的进水连续运行一段时间。
86.实时监测反应器中污泥形态、叶绿素浓度以及出水碳氮磷的浓度。
87.实施例2
88.本实施例与实施例1基本相同，不同之处在于，将(一)中制得的混合生物菌液与(一)步骤1中的人工模拟生活污水按一定比例(v/v为1/800)组合配置。
89.对比例1
90.本对比例与实施例1基本相同，不同之处在于，本对比例中(二)(2)未在进水中投加混合生物菌液，仅投加与实施例1中的混合生物菌液等量的lb液体培养基。
91.对比例2
92.本对比例与实施例1基本相同，不同之处在于，本对比例中(二)(2)未在进水中添加混合生物菌液，而是添加购买的信号分子混合液(信号分子混合液是c6-hsl、c8-hsl、3oc12-hsl及c12-hsl的等体积混合液，含有信号分子的进水中的信号分子浓度为50nmol/l，含该浓度信号分子的进水用根癌农杆菌显色反应后发现与实施例中的进水显色面积一致，说明对比例2中的信号分子浓度与实施例1基本相同)。
93.实施例1和2以及对比例1和2中投加混合生物菌液或培养基/信号分子液的时间均保持一致，当其中一个实施方式的污泥形态及除污率恢复到接近静置前的稳定状态后停止投加，即以恢复最快的实施方式为基准。
94.试验结果表明实施例1中的污泥颜色在5天后已变为浅黄色，此时cod去除率已达到80％，10天后恢复成浅绿色。叶绿素a浓度在第1d时检测不出，第10d则恢复到1.33mg/g
·
vss。mlss从2250mg/l增加至2685mg/l，污泥的svi
30
恢复至40.15ml/g。第15d时丝状细菌含量明显减少，颗粒粒径显著增加，显微镜下所有颗粒均结构完整，边缘紧凑，颜色呈深绿色。tp去除率在第20d恢复至70％以上。第25d停止投加混合生物菌液，此时污泥的svi
30
恢复至30ml/g，如图5、图6所示，第25d时，实施例1的氨氮、总磷去除率均在80％以上，反应器整体继续保持良好运行状态。停止投加功能细菌后，继续监测没有投加功能细菌后的运行状况。采用本发明激活方法的藻-菌颗粒污泥长时间也未出现不稳状态。第50d的颗粒形态如图3所示。实施例2中投加的混合生物菌液浓度较实施例1略低，出水水质恢复速度较实施例1略慢，第35d基本恢复到静置前稳定状态的水平，但仍优于对比例1、对比例2。
95.对比例1中的反应器出水nh
4+-n浓度到第35d才基本恢复至静置前的稳定状态，tp则花费时间更长，需要近50天，除此以外50天时部分(30％以上)颗粒边缘仍可观察到游离的丝状细菌，上清液存在悬浮的微藻，整体较为浑浊，污泥沉降性能和污染物去除率均较实施例差。第50d中对比例1的颗粒形态如图4所示。对比例2的出水在第40d基本恢复到静置前稳定状态的水平，相较于实施例1、2需要的时间仍然较长。
96.显然，上述实施例仅仅是为清楚地说明所作的举例，而并非对实施方式的限定。对于所属领域的普通技术人员来说，在上述说明的基础上还可以做出其它不同形式的变化或变动。这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。而由此所引申出的显而易见的变化或
变动仍处于本发明创造的保护范围之中。

技术特征：
1。10.根据权利要求9所述的激活方法，其特征在于，所述混合生物菌液的投加量与进水量的体积比在1/1000～1/500之间。

技术总结
一种失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法，属于水处理技术领域，克服现有技术中的ABGS(藻-菌颗粒污泥)在室温下长期储存后再启动效果差的缺陷。一种失稳藻-菌颗粒污泥的激活方法，包括：投加失稳藻-菌颗粒污泥，将能分泌AHLs的功能细菌投加至进水中，一直运行至藻-菌颗粒污泥的边缘紧实、SVI


技术研发人员：吕婉琳 陈亚松 李翀 陈磊 王殿常 柳蒙蒙 万新宇 景方圆
受保护的技术使用者：中国长江三峡集团有限公司
技术研发日：2023.06.16
技术公布日：2023/9/13